蛋白質(zhì),作為生命活動(dòng)的主要執(zhí)行者,構(gòu)成了生命的物質(zhì)基礎(chǔ)。中心法則的提出讓分子—蛋白研究得以具象化,DNA 的復(fù)制、轉(zhuǎn)錄和翻譯,使神奇而復(fù)雜的生命現(xiàn)象得以解析。
從序列的合成至其轉(zhuǎn)化鑒定,再到蛋白質(zhì)的表達(dá)以及最終的純化,每一個(gè)環(huán)節(jié)都需要精確且細(xì)致的設(shè)計(jì)而這一全過(guò)程的探索,無(wú)疑為我們打開(kāi)了生命研究的新視野。在此過(guò)程中,MCE 提供全品類(lèi)的產(chǎn)品和全方位的服務(wù)助力您的科學(xué)研究。

1 載體構(gòu)建及檢測(cè)
載體構(gòu)建是生物技術(shù)中的一項(xiàng)關(guān)鍵步驟,主要用于克隆、表達(dá)特定基因以及進(jìn)行基因編輯等研究。MCE 提供分子克隆工具、瓊脂糖凝膠電泳等產(chǎn)品,使您的載體構(gòu)建和分析檢測(cè)過(guò)程更加快捷高效。

2 蛋白樣本制備
蛋白樣本制備是蛋白生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的核心步驟。其主要目的是:從組織或細(xì)胞中提取蛋白質(zhì),用于蛋白質(zhì)純化和濃縮,進(jìn)而檢測(cè)和分析。MCE 提供的抑制劑 Cocktail 和裂解液能在最大程度上確保蛋白的有效提取,為您的實(shí)驗(yàn)研究提供有力保障。

3 蛋白純化
蛋白純化的目的是從復(fù)雜的樣本(如細(xì)胞裂解液或組織提取物)中篩選、提取出特定的蛋白質(zhì)。在分子克隆載體構(gòu)建設(shè)計(jì)時(shí),通過(guò)添加易于檢測(cè)的標(biāo)簽實(shí)現(xiàn)后續(xù)蛋白質(zhì)的純化。MCE 提供磁珠、瓊脂糖磁珠、瓊脂糖等純化介質(zhì),能夠有效地純化帶有 HA、c-Myc、His、GST、Flag 等標(biāo)簽的蛋白質(zhì),同時(shí) MCE 也提供抗體純化相關(guān)產(chǎn)品。

4 蛋白檢測(cè)分析
蛋白質(zhì)分析檢測(cè)在生物化學(xué)和分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)中扮演著重要的角色。MCE 可提供一套全面的產(chǎn)品工具,以助力您高效進(jìn)行蛋白質(zhì)的純度、大小和濃度等檢測(cè)。

客戶(hù)驗(yàn)證:
穩(wěn)定可靠,重復(fù)性高

特異性強(qiáng),背景干凈


5 常見(jiàn)問(wèn)題解答
1. HY-K1004 與 HY-K1007 兩款核酸染料的區(qū)別是什么?

2. PCR 擴(kuò)增效率低,條帶較弱或無(wú)擴(kuò)增,該如何解決?
(1) 酶:實(shí)驗(yàn)表明,PCR 酶對(duì)于 DNA 具有一定的偏好性。如使用一種酶經(jīng)過(guò)優(yōu)化難以獲得理想擴(kuò)增時(shí),可以嘗試其它 PCR 酶。
(2) 模板引物:確保模板、引物的品質(zhì),保證沒(méi)有降解。另外,如果模板含有較多的抑制物時(shí)(如植物基因組模板),推薦使用抗抑制能力強(qiáng)的 PCR 酶;還可以對(duì)模板進(jìn)行梯度稀釋后擴(kuò)增,摸索合適的模板用量。
(3) 反應(yīng)體系與條件:增加循環(huán)數(shù)、降低退火溫濕度、適當(dāng)提高 Mg2+工作濃度,都可以提高擴(kuò)增效率,但同時(shí)會(huì)導(dǎo)致特異性與保真性下降,需要根據(jù)具體的實(shí)驗(yàn)要求優(yōu)化合適的條件。
3. 現(xiàn)有幾款裂解液之間有什么區(qū)別?該如何選擇?

4. 抑制劑該如何選擇?


注:HY-K0021 和 HY-K0023 均為 HY-K0022 的有效補(bǔ)充,使用時(shí)建議選擇組合形式:HY-K0021 + HY-K0022 或 HY-K0022 + HY-K0023 ,可以單獨(dú)使用,但不推薦。
5. His 標(biāo)簽蛋白純化后蛋白純度不佳,是什么原因?qū)е碌?有哪些方法可以改善?br />
(1) 洗脫條件:使用咪唑濃度梯度或 pH 值梯度洗脫。不同蛋白質(zhì)最佳洗脫條件不同,需要摸索優(yōu)化;
(2) 介質(zhì)因素:雜蛋白與介質(zhì)可能存在非特異性結(jié)合,可以在在平衡緩沖液與樣品緩沖液中加入一定濃度的咪唑 ( 推薦濃度 : ≤ 20 mM,因蛋白而異 ),降低非特異性結(jié)合;
(3) 蛋白間作用:雜蛋白與目的蛋白可能存在非特異性結(jié)合,可以在在平衡緩沖液與樣品緩沖液中加入非離子型去垢劑( Triton X-100: ≤ 1% )、甘油 ( ≤ 10% )、NaCl ( ≥ 300 mM )、還原劑 ( β- 巰基乙醇 : ≤ 20 mM ) 等組分;
(4) 目的蛋白降解:建議在低溫下純化目的蛋白,并在平衡緩沖液與樣品緩沖液中加入蛋白酶抑制劑( 如 HY-K0010、HY-K0011 等 );
(5) 存在表達(dá)提前終止:表達(dá)終止導(dǎo)致蛋白未正確攜帶標(biāo)簽,建議更換表達(dá)載體。
6. 磁珠與瓊脂糖凝膠產(chǎn)品應(yīng)該如何選擇?
(1) 免疫沉淀( 當(dāng)樣品體積 < 2 mL )。在日常小型分離特定蛋白質(zhì)和蛋白復(fù)合物時(shí),磁珠可實(shí)現(xiàn)結(jié)合能力/得率、可重復(fù)性純度和成本節(jié)約之間的平衡。當(dāng)進(jìn)行手動(dòng)和自動(dòng)化標(biāo)準(zhǔn) IP、Co-IP、ChIP、ChIP-Seq、RIP 和 pull-down 反應(yīng)并立即用于后續(xù)檢測(cè)分析時(shí),磁珠是最佳選擇。
(2) 蛋白質(zhì)純化(當(dāng)樣品體積 > 2 mL)。當(dāng)需要獲得大量目標(biāo)蛋白時(shí),可選用瓊脂糖凝膠,瓊脂糖適用于柱親和色譜或獨(dú)立大型旋轉(zhuǎn)杯免疫沉淀反應(yīng)。
7. 為什么蛋白質(zhì)印跡條帶大小與預(yù)期的不同?
蛋白質(zhì)印跡是一種基于蛋白質(zhì)大小來(lái)分離蛋白質(zhì)的技術(shù)。一般來(lái)講,蛋白質(zhì)越小,在膠上的遷移速度越快。但遷移速度也受其它因素的影響,因此,觀察到的實(shí)際條帶大小可能與預(yù)測(cè)的不同。
常見(jiàn)的因素:
(1) 翻譯后修飾:磷酸化、糖基化等,蛋白實(shí)際會(huì)偏大
(2) 翻譯后切割:許多蛋白先被合成為前蛋白,然后被切割產(chǎn)生活性形式,例如前半胱天冬酶,蛋白實(shí)際會(huì)偏。
(3) 剪接變體和異形體:可變剪接和異形體可能從同一基因產(chǎn)生不同大小的蛋白質(zhì);
(4) 聚體:蛋白質(zhì)形成多聚體。這種情況通常在還原條件下可以緩解,但強(qiáng)相互作用會(huì)導(dǎo)致較大的條帶出現(xiàn)。
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