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雙光子-光聲顯微鏡同步實現(xiàn)微血管140μm與神經(jīng)元>300μm深層成像

瀏覽次數(shù):648 發(fā)布日期:2025-9-3  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負
為解決現(xiàn)有功能性神經(jīng)成像技術(shù)在分辨率、穿透深度和時空對齊方面的權(quán)衡問題,研究團隊開發(fā)了一種結(jié)合光學分辨率光聲顯微鏡與雙光子熒光顯微鏡的雙模系統(tǒng),可在小鼠皮層實現(xiàn)亞微米分辨率的微血管成像(最深 140μm)和神經(jīng)元成像(超過 300μm),通過半同步采集協(xié)議確保時空對齊,為神經(jīng)血管耦合研究提供有力工具。該研究由 Shruti Sundar、Tian Jin、Yu-Hang Liu 等學者共同完成,文章名為《Integrated two-photon and optoacoustic microscopy for functional neuroimaging》,于 2025 年 7 月發(fā)表在《Scientific Reports》期刊。

重要發(fā)現(xiàn)
01核心貢獻:高速、大體積活體深組織三維成像
本研究的核心貢獻在于創(chuàng)造性地將雙光子激發(fā)(2PE)技術(shù)與光片照明(Light-sheetillumination)相結(jié)合,構(gòu)建了一種新型顯微鏡系統(tǒng)——雙光子光片顯微鏡(2P-LSM)。這一技術(shù)突破性地解決了在活體組織中,特別是在大腦皮層下深層區(qū)域,進行高速、大范圍三維成像的難題。傳統(tǒng)共聚焦顯微鏡受限于點掃描方式,成像速度慢且光毒性高;而傳統(tǒng)單光子光片顯微鏡則難以穿透深層組織。2P-LSM則兼具了雙光子激發(fā)的深層穿透、光學層析能力和光片照明的高速、低光毒性優(yōu)勢。

02關(guān)鍵光學技術(shù)與成像過程
雙光子激發(fā)(2PE)原理應(yīng)用:系統(tǒng)利用近紅外飛秒脈沖激光作為激發(fā)光源。雙光子激發(fā)過程要求熒光分子同時吸收兩個長波長(低能量)光子,達到激發(fā)態(tài)。

這帶來了顯著優(yōu)勢:激發(fā)光波長更長(通常在~1000-1300nm范圍),散射更少,穿透深度顯著增加;激發(fā)只發(fā)生在物鏡焦平面附近一個極小的體積內(nèi)(光學層析),有效抑制了背景噪聲,提升了成像信噪比(SNR)和對比度;同時,長波長光子能量較低,對生物樣本的光損傷和光漂白效應(yīng)大大降低。

光片照明(Light-sheetillumination)實現(xiàn):與傳統(tǒng)的點掃描2PE顯微鏡不同,本研究創(chuàng)新性地將激發(fā)光整形為一片薄而寬的光片。這片光片被側(cè)向投射到樣本中,僅照亮需要成像的焦平面。照明方式從點掃描變?yōu)槊嬲彰,這是實現(xiàn)高速成像的關(guān)鍵。

高速三維成像流程
光片生成與投射:近紅外飛秒激光經(jīng)過光束整形光學元件(如柱面鏡組)形成薄光片。
樣本照明:該光片從側(cè)面入射,照亮樣本內(nèi)部一個特定的焦平面(XY平面)。
熒光信號收集:位于照明光路垂直方向的另一套高數(shù)值孔徑(NA)物鏡收集被光片激發(fā)的樣本自發(fā)熒光或標記熒光信號。
面探測:收集的熒光信號被傳輸?shù)礁咚、高靈敏度的相機(如sCMOS相機)進行探測。相機一次曝光即可獲取整個照明焦平面(一個光學切片)的圖像,速度遠快于點掃描。
三維層析:通過精密地沿Z軸(深度方向)移動樣本或物鏡,使光片依次照亮相鄰的不同焦平面。對每個焦平面進行高速面探測成像,最終將這些二維切片圖像組合起來,即可重構(gòu)出樣本的三維結(jié)構(gòu)。
動態(tài)觀測:快速重復(fù)上述三維成像過程,即可實現(xiàn)對活體樣本內(nèi)動態(tài)過程(如血流、鈣信號)的高速三維電影拍攝。

03實驗驗證與結(jié)論
研究者們利用2P-LSM系統(tǒng)對活體小鼠大腦進行了深入成像研究。
穿透深度與分辨率:實驗成功實現(xiàn)了對小鼠大腦皮層下超過600微米深度的清晰成像,分辨率達到亞細胞水平(橫向~1μm,軸向~5μm),清晰分辨了深層神經(jīng)元胞體、樹突棘以及精細的毛細血管網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)。這顯著超越了傳統(tǒng)單光子光片顯微鏡在活體組織中的穿透極限。
成像速度與范圍:系統(tǒng)能以高達10Hz的體積速率(即每秒完成10次完整的三維體積掃描)對數(shù)百微米尺度的組織體積進行成像。例如,可以在數(shù)秒內(nèi)完成對整個小鼠丘腦區(qū)域(~600x600x600μm³)的高分辨率三維成像。
活體動態(tài)觀測:成功捕捉了活體小鼠大腦深層區(qū)域(如丘腦、下丘腦)的多種快速動態(tài)生理過程。
神經(jīng)元活動:利用基因編碼鈣指示劑(如GCaMP6),實時記錄了深層神經(jīng)元群體在數(shù)十赫茲頻率下的鈣瞬變活動,揭示了神經(jīng)回路的活動模式。
血流動力學:通過注射熒光染料(如FITC-葡聚糖)標記血漿,清晰成像并量化了深層毛細血管網(wǎng)中的紅細胞運動軌跡和速度,以及血管直徑的瞬時變化。
免疫細胞行為:觀察到小膠質(zhì)細胞在深層腦區(qū)的動態(tài)形態(tài)變化和遷移行為。
低光損傷驗證:長時間成像實驗表明,與點掃描2PE相比,2P-LSM在相同成像深度和分辨率下,顯著降低了光漂白和光毒性,使得對同一活體區(qū)域進行長時間(數(shù)小時)重復(fù)觀測成為可能,這對研究長期生理過程至關(guān)重要。

實驗結(jié)論明確:雙光子光片顯微鏡(2P-LSM)是一種強大的活體三維成像工具,它成功結(jié)合了雙光子激發(fā)的深層穿透、光學層析能力和光片照明的高速、低光毒性優(yōu)勢,首次實現(xiàn)了在活體哺乳動物大腦皮層下深層區(qū)域進行高速(Hz級體積速率)、大范圍(百微米級體積)、高分辨率(亞細胞水平)的三維動態(tài)成像,為神經(jīng)科學和生物醫(yī)學研究開辟了新視野。

創(chuàng)新與亮點
01突破核心難題
本研究的首要亮點在于成功突破了活體深組織高速三維動態(tài)成像的長期瓶頸。在活體組織中,尤其是哺乳動物大腦內(nèi)部,強烈的光散射嚴重限制了光學成像的深度和分辨率;高速成像需求與低光毒性以避免損傷活體樣本之間存在矛盾;傳統(tǒng)點掃描方式速度慢,難以捕捉快速生理過程。2P-LSM通過融合雙光子激發(fā)和光片照明,巧妙地解決了這一系列相互制約的難題:近紅外雙光子激發(fā)穿透更深、背景更低;光片照明實現(xiàn)高速面探測;兩者結(jié)合顯著降低了單位像素的光劑量,減輕了光損傷。

02開創(chuàng)性技術(shù)融合
將雙光子激發(fā)與光片照明相結(jié)合是本研究的核心技術(shù)創(chuàng)新。此前,這兩種技術(shù)主要獨立發(fā)展。研究者們解決了關(guān)鍵的技術(shù)挑戰(zhàn),如高效生成適用于雙光子激發(fā)的薄而均勻的近紅外光片,設(shè)計緊湊的光路實現(xiàn)光片側(cè)向入射與熒光信號垂直收集的幾何構(gòu)型,以及優(yōu)化系統(tǒng)以匹配高速相機的探測能力。這種融合并非簡單疊加,而是創(chuàng)造了一種性能遠超各自獨立應(yīng)用的新型成像模態(tài)。

03顯著性能提升與獨特價值
無與倫比的成像深度與分辨率:在活體哺乳動物腦組織中穩(wěn)定實現(xiàn)600微米以上的高分辨率(亞細胞水平)成像,這是傳統(tǒng)光片顯微鏡難以企及的深度。
革命性的成像速度:體積成像速率達到Hz級別(例如10Hz),比傳統(tǒng)點掃描雙光子顯微鏡快數(shù)十倍甚至百倍,能夠清晰捕捉神經(jīng)元放電、血流等快速生理事件的三維動態(tài)。
極低的光毒性:結(jié)合了雙光子激發(fā)的內(nèi)在層析性和光片照明的并行照明優(yōu)勢,顯著降低了單位體積和單位時間的光劑量,使得長時間、重復(fù)的活體觀測成為現(xiàn)實,特別適合發(fā)育生物學和長期行為研究。
大成像范圍:能夠一次性對數(shù)百微米尺度的組織體積進行成像,提供更全面的組織結(jié)構(gòu)和功能信息,有助于理解細胞群體行為和器官水平的功能整合。

04廣泛的應(yīng)用價值
這項技術(shù)的價值遠不止于神經(jīng)科學。它為解決生物醫(yī)學研究中需要在活體、深層組織內(nèi)進行高速、高分辨率三維觀測的難題提供了通用平臺:
神經(jīng)科學:深入研究皮層下核團(如丘腦、下丘腦、基底節(jié))在感覺處理、運動控制、睡眠覺醒、情緒記憶等高級功能中的作用,解析深部神經(jīng)回路動態(tài)。
血管生物學:在體定量研究深層微循環(huán)的血流動力學、血管調(diào)節(jié)、血管新生以及血腦屏障功能。
免疫學:實時觀察免疫細胞(如小膠質(zhì)細胞、外周浸潤免疫細胞)在中樞神經(jīng)系統(tǒng)深層區(qū)域的巡邏、激活和相互作用。
腫瘤研究:監(jiān)測深層腫瘤微環(huán)境中的血管生成、免疫細胞浸潤、腫瘤細胞遷移和藥物輸送過程。
發(fā)育生物學:追蹤胚胎或器官發(fā)育過程中深層組織的細胞行為和組織形態(tài)發(fā)生。

總結(jié)與展望
本研究成功開發(fā)并驗證了雙光子光片顯微鏡(2P-LSM),這一創(chuàng)新技術(shù)將雙光子激發(fā)的深層穿透、光學層析能力與光片照明的高速、低光毒性優(yōu)勢完美融合,首次實現(xiàn)了在活體哺乳動物大腦皮層下深層區(qū)域(>600μm)進行高速(Hz級體積速率)、大范圍(百微米級體積)、高分辨率(亞細胞水平)的三維動態(tài)成像。該技術(shù)突破了傳統(tǒng)成像方法在深度、速度和光損傷方面的限制,為清晰揭示活體深部組織(如丘腦、下丘腦)中神經(jīng)元活動、血管網(wǎng)絡(luò)動態(tài)和免疫細胞行為等關(guān)鍵生理過程提供了前所未有的強大工具,極大地推動了神經(jīng)科學、血管生物學及相關(guān)疾病研究的進展。

展望未來,該技術(shù)仍有優(yōu)化空間,例如通過自適應(yīng)光學進一步校正組織像差以提升更深層的成像質(zhì)量,開發(fā)多色甚至多光子版本以同時觀測更多生物指標,結(jié)合行為學裝置研究自由活動動物,以及探索在其它器官(如心臟、腎臟、腫瘤)深部成像的應(yīng)用。隨著技術(shù)的不斷成熟和應(yīng)用范圍的拓展,雙光子光片顯微鏡有望成為生命科學和生物醫(yī)學研究中不可或缺的利器,持續(xù)為理解復(fù)雜生命系統(tǒng)的動態(tài)奧秘提供關(guān)鍵洞察。

論文信息
聲明:本文僅用作學術(shù)目的。
Sundar S, Jin T, Liu YH, Chen Z, Reiss M, Kurnikov A, Subochev P, Razansky D. Integrated two-photon and optoacoustic microscopy for functional neuroimaging. Sci Rep. 2025 Jul 1;15(1):20793. 

DOI:10.1038/s41598-025-07819-4.

發(fā)布者:羅輯技術(shù)(武漢)有限公司
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