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熒光原位雜交(FISH)的原理、實驗流程和技術(shù)聯(lián)用

瀏覽次數(shù):309 發(fā)布日期:2026-2-5  來源:MCE(MedChemExpress)
Section.01
熒光原位雜交
(FISH) 技術(shù)
 
熒光原位雜交 (簡稱 FISH)——一種重要的細(xì)胞遺傳學(xué)技術(shù),該技術(shù)用于獲取空間基因組和轉(zhuǎn)錄組信息。FISH 廣泛應(yīng)用于基因組學(xué)和細(xì)胞生物學(xué)研究,以及預(yù)防醫(yī)學(xué)、生殖醫(yī)學(xué)和腫瘤學(xué)等領(lǐng)域的診斷應(yīng)用。

它是檢測染色體異常的金標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)!
 

基本原理

熒光原位雜交是一種用于檢測和定位染色體上特定 DNA 序列的實驗室技術(shù)。該技術(shù)將個體的全套染色體固定在載玻片上,然后用 "探針" (一小段標(biāo)記有熒光染料的純化 DNA)進(jìn)行染色。熒光標(biāo)記的探針會找到并結(jié)合染色體上的對應(yīng)序列。借助專用顯微鏡,可以觀察到熒光探針結(jié)合的染色體及其亞染色體區(qū)域。常用來確定結(jié)合了熒光探針的 DNA 區(qū)域、RNA 分子在染色體及其他細(xì)胞器中的定位 (圖 1)。

圖 1. 熒光原位雜交技術(shù)原理示意圖[1]

技術(shù)優(yōu)勢

高靈敏度與特異性:可精準(zhǔn)檢測并定位目標(biāo)核酸序列,即便處于復(fù)雜細(xì)胞環(huán)境中,也能有效區(qū)分目標(biāo)序列與非目標(biāo)序列。
支持多色熒光標(biāo)記:能夠同時檢測多個目標(biāo)序列,顯著提升檢測效率與準(zhǔn)確性。
直觀可視化效果:借助熒光顯微鏡,可直接觀察目標(biāo)序列在細(xì)胞或組織內(nèi)的分布及定位情況。
適用范圍廣泛:可應(yīng)用于分裂與非分裂細(xì)胞,能夠檢測隱性基因缺失、基因易位及低水平基因嵌合體,且可在石蠟包埋組織 (PET) 切片上進(jìn)行操作。

Section.02
實驗流程

FISH 實驗的核心步驟為:樣品制備 →預(yù)處理 →雜交 →洗滌  →復(fù)染與封片 →熒光顯微鏡觀察與分析。

其中,樣品預(yù)處理的關(guān)鍵在于暴露細(xì)胞或組織內(nèi)的核酸,以確保探針有效結(jié)合,這一過程通常涉及蛋白酶消化與梯度乙醇脫水操作。組織預(yù)處理步驟見圖 2。

圖 2. 新鮮冷凍組織與多聚甲醛固定組織的組織預(yù)處理步驟并行工作流程[2]。

組織預(yù)處理完成后,使用疏水屏障筆對載玻片上的組織進(jìn)行包膜處理 (圈畫),隨后置于蛋白酶溶液中室溫孵育。洗滌后,將組織轉(zhuǎn)移至臺式培養(yǎng)箱雜交 2 小時,再依次進(jìn)行擴(kuò)增步驟。完成 FISH 探針處理后,組織需先進(jìn)行洗滌,再用正常馬血清封閉。一抗孵育在 4°C 條件下過夜進(jìn)行,以確?贵w與抗原的充分結(jié)合;二抗孵育則在室溫下持續(xù) 2 小時 (圖 3)。


圖 3. FISH 探針操作流程示意圖[2]。
 
實驗Protocol (供參考[3])


1. 制備標(biāo)記有 DIG (或 FITC 等其他標(biāo)記)的反義探針。
2. 對組織進(jìn)行解剖,用 4% 磺酸鈉溶液固定,并在 20% 蔗糖溶液中進(jìn)行冷凍保護(hù)處理,然后迅速冷凍。
3. 切割冷凍切片,并將其收集在防脫載玻片上。讓其干燥。
4. 將標(biāo)記探針稀釋至雜交緩沖液中的 1/1000 倍濃度。每張載玻片加入至少 300 微升,然后在上面放置一塊干燥蓋玻片,以使溶液均勻分布在切片上。
5. 在加濕的培養(yǎng)箱中于 65°C 下孵育過夜。
6. 移去蓋玻片,在 MABT 緩沖液中洗滌 2 次,每次 5 分鐘。
7. 接著在 65°C 下用 65°C 洗滌緩沖液洗滌 2 次,每次30 分鐘。
8. 用 MABT 緩沖液洗滌2次,每次 5 分鐘。
9. 用封閉液封閉 1 小時。
10. 將 AP-Anti-Dig 抗體稀釋至封閉溶液中的 1/1500 倍濃度 (對于與過氧化物酶結(jié)合的抗體則為 1/500)。每張載玻片加入 500 微升,于 4°C 下孵育過夜。
11. 在 MABT 緩沖液中洗滌 3 次,每次 10 分鐘。
12. 在 pH 9.8 的預(yù)顯色緩沖液中短暫洗滌 (2 分鐘即可)
13. 在 pH 9.8 的顯色緩沖液(含 5% PVA 和 NBT/BCIP) 中于 37°C 下孵育,讓藍(lán)色熒光達(dá)到到所需的強度 (2 小時至過夜),然后用自來水沖洗以終止反應(yīng)。
14. 進(jìn)行脫水處理,并用二甲苯基基質(zhì)進(jìn)行封片。
15. 使用熒光顯微鏡觀察樣品,識別并定位熒光信號。

表1. FISH探針的主要類型。

Section.03
FISH 的技術(shù)聯(lián)用

mRNA FISH-IHC

mRNA FISH 和 IHC 成像結(jié)合可用于表征 AD 模型中補體靶向療法的療效,或結(jié)合其他與阿爾茨海默病病理相關(guān)的蛋白聚集體 (如 tau、突觸核蛋白) 研究基因表達(dá)。

案例』:結(jié)合 FISH 和 IHC 檢測小鼠大腦中淀粉樣斑塊膠質(zhì)補體表達(dá)

補體蛋白可促進(jìn)阿爾茨海默病 (AD)的神經(jīng)退行性病變,這類蛋白由包圍 β- 淀粉樣斑塊的膠質(zhì)細(xì)胞分泌。為此,作者提出了一種基于酪酰胺-地高辛(Tyramide-digoxigenin) 信號擴(kuò)增技術(shù)的 Aβ 斑塊檢測優(yōu)化方案 (如圖 4)。該方案結(jié)合多重 mRNA 原位熒光雜交 (FISH) 技術(shù),用于檢測 TauPS2APP 小鼠模型中 Aβ 斑塊近端區(qū)域膠質(zhì)細(xì)胞特異性的補體表達(dá)情況。結(jié)果表明,通過信號放大處理,在連續(xù)的 FISH-IHC 實驗中可獲得更高的信噪比,并實現(xiàn)對彌漫性 Aβ 斑塊的靈敏檢測 (如圖 5)。

FISH-Flow

FISH-Flow 技術(shù)通過將熒光寡核苷酸與 RNA 雜交,借助流式細(xì)胞術(shù)實現(xiàn)單細(xì)胞層面的熒光定量分析。

案例』:FISH-Flow 用于定量小鼠和人類細(xì)胞中新生和成熟核糖體 RNA。

研究人員開發(fā)了一種 FISH-Flow 方法,可用于定量小鼠和人類細(xì)胞中新生的 47S rRNA 以及成熟的 18S 和 28S rRNA,該方法還能結(jié)合 DNA 染色技術(shù),完成跨細(xì)胞周期階段的 rRNA 定量檢測 (如圖 6)。

無論是新生的還是成熟的核糖體 RNA 在細(xì)胞中都十分豐富。因此,如圖 7A 所示,針對 rRNA 的 FISH 探針具有較高的信噪比。用 DNA 結(jié)合的 DAPI 染料進(jìn)行染色,可將細(xì)胞群體分為 G1/S/G2-M 期,并對細(xì)胞周期各階段的 rRNA 進(jìn)行定量,如圖 7B 所示。

序列熒光原位雜交 (seqFISH)

序列熒光原位雜交 (seqFISH,sequential fluorescence in situ hybridization) 是一種先進(jìn)的生物分子分析方法,將成像技術(shù)與組合分子條形碼技術(shù)相結(jié)合,利用已知序列的探針,對細(xì)胞/組織內(nèi)的全 RNA 做多輪雜交成像,通過分析探針兩臂區(qū)域 barcode 的熒光信號組合來判斷基因 ID,講特定位置信息與基因 ID 關(guān)聯(lián)生成圖像。seqFISH 方法能夠在原生組織和器官環(huán)境中獲得高分辨率的細(xì)胞類型、狀態(tài)、和鄰域關(guān)系信息 (圖 8)

圖 8. Stereo-seq 流程[6]。

步驟 1,設(shè)計 DNB 模式化陣列芯片。步驟 2,原位測序以確定唯一條形碼寡核苷酸的空間坐標(biāo)。步驟 3,通過將含 UMI-polyT 的寡核苷酸連接到每個點來制備捕獲探針。步驟 4,從組織中進(jìn)行原位 RNA 捕獲。步驟 5,cDNA 擴(kuò)增、文庫構(gòu)建和測序。步驟 6,數(shù)據(jù)分析。
 
Section.04

諾獎得主的最新研究:
smLiveFISH

就在今年!諾貝爾化學(xué)獎得主、CRISPR 基因編輯技術(shù)先驅(qū) Jennifer Doudna 教授團(tuán)隊在Nature Biotechnology 期刊發(fā)表了題為 “Single-molecule live-cell RNA imaging with CRISPR–Csm” 的研究論文。該團(tuán)隊開發(fā)出一種單分子活細(xì)胞熒光原位雜交技術(shù) (Single-molecule live-cell fluorescence in situ hybridization,smLiveFISH)。

smLiveFISH

【單分子活細(xì)胞熒光原位雜交技術(shù)】

該技術(shù)借助嗜熱鏈球菌來源的 RNA 靶向 III-A 型 CRISPR-Csm 系統(tǒng)及多重向?qū)NA,使研究人員能夠在包含原代細(xì)胞在內(nèi)的多種細(xì)胞類型中,直接且高效地實現(xiàn)單個 RNA 分子的可視化,進(jìn)而追蹤不同種類活細(xì)胞中單個 mRNA 分子的動態(tài)軌跡 (圖 9)。

圖 9. smLiveFISH 系統(tǒng)的工作示意圖[7]

如圖所示,GFP 標(biāo)記的 Csm 復(fù)合物標(biāo)記單個 NOTCH2 mRNA (圖 10 a 和 b 左圖),smFISH 探針標(biāo)記 NOTCH2 mRNA (圖 10 a 和 b 中圖),兩者的疊加圖像顯示共定位情況 (圖 10 a 和 b 右圖)。Csm 復(fù)合物病灶與 smFISH 病灶的共定位比例、以及具有 Csm 復(fù)合物標(biāo)記病灶的轉(zhuǎn)染細(xì)胞比例均可進(jìn)行量化 (圖 10c-d)

圖 10. 利用 smLiveFISH 對天然單個 mRNA 分子進(jìn)行成像[7]。

通過雙色成像驗證,Csm 復(fù)合物成功標(biāo)記內(nèi)源性 NOTCH2 mRNA,并在多種細(xì)胞類型中實現(xiàn)穩(wěn)健檢測,且未對 mRNA 的穩(wěn)定性、衰變速率、定位及蛋白質(zhì)表達(dá)產(chǎn)生影響。此外,smLiveFISH 技術(shù)也成功標(biāo)記 MAP1B mRNA,通過共定位實驗驗證了信號的準(zhǔn)確性,同時揭示其在細(xì)胞外圍富集的空間分布特征,且同樣未干擾 mRNA 的穩(wěn)定性、衰變速率、定位及蛋白質(zhì)表達(dá),進(jìn)一步證明該技術(shù)適用于不同 RNA 分子的可視化研究。

MCE 可以根據(jù)客戶需求提供 FISH 探針的設(shè)計和定制服務(wù),進(jìn)行相關(guān)的檢測服務(wù)(純度、序列和結(jié)構(gòu)分析等),確保產(chǎn)品的有效性與一致性,始終保證優(yōu)質(zhì)高效的服務(wù)品質(zhì)!

 

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[1] Debnath, et al. Molecular Diagnostics: Promises and Possibilities.Springer.2010;153-170.
[2] Dereli AS, et al. Combining Multiplex Fluorescence in situ Hybridization with Fluorescent Immunohistochemistry on Fresh Frozen or Fixed Mouse Brain Sections. J Vis Exp. 2021 Jun 25;(172). 
[3]N.P.Pringle.etal.Insituhybridizationprotocols. https://www.ucl.ac.uk/%7Eucbzwdr/In%20Situ%20Protocol.pdf
[4] Rao S, et al. Protocol for detection of glial complement expression in relation to amyloid plaques in mouse brain with combined FISH and IHC. STAR Protoc. 2024 Dec 20;5(4):103388. 
[5] Antony C, et al. FISH-Flow to quantify nascent and mature ribosomal RNA in mouse and human cells. STAR Protoc. 2023 Sep 15;4(3):102463. 
[6] Chen A, et al. Spatiotemporal transcriptomic atlas of mouse organogenesis using DNA nanoball-patterned arrays. Cell. 2022 May 12;185(10).
[7] Xia C, et al. Single-molecule live-cell RNA imaging with CRISPR-Csm. Nat Biotechnol. 2025 Feb 18.

發(fā)布者:上海皓元生物醫(yī)藥科技有限公司
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