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文獻(xiàn)解讀:評估代謝RNA標(biāo)記技術(shù)在高通量單細(xì)胞RNA測序中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):425 發(fā)布日期:2025-10-30  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

期刊:Nature communications
影響因子:15.7

主要技術(shù):華大C4 scRNA-seq,10x scRNA-seq

導(dǎo)語
代謝RNA標(biāo)記結(jié)合高通量單細(xì)胞RNA測序(scRNA-seq)能夠精確測量復(fù)雜生物過程中基因表達(dá)動態(tài),如細(xì)胞狀態(tài)轉(zhuǎn)換和胚胎發(fā)育。該技術(shù)通過誘導(dǎo)堿基轉(zhuǎn)換標(biāo)記新合成的RNA以進(jìn)行檢測,依賴于轉(zhuǎn)換效率、RNA完整性和轉(zhuǎn)錄本回收率。這些因素受所選化學(xué)轉(zhuǎn)換方法和平臺兼容性的影響。本研究使用Drop-seq平臺對十種化學(xué)轉(zhuǎn)換方法進(jìn)行測試,分析了52,529個細(xì)胞。分析發(fā)現(xiàn),基于beads的方法,特別是mCPBA/TFEA,優(yōu)于原位(In-suit)方法。為評估體內(nèi)應(yīng)用,作者將這些優(yōu)化方法應(yīng)用于9,883個斑馬魚胚胎細(xì)胞在母體到合子轉(zhuǎn)換期間,識別并驗證了合子激活轉(zhuǎn)錄本,增強了合子基因檢測能力。此外,作者還評估了兩種捕獲效率更高的商業(yè)化平臺,發(fā)現(xiàn)固相上的碘乙酰胺(IAA)化學(xué)方法最為有效。本研究結(jié)果為選擇最佳化學(xué)方法和scRNA-seq平臺提供了關(guān)鍵指導(dǎo),推動了復(fù)雜生物系統(tǒng)中RNA動態(tài)研究。

主要技術(shù)
華大C4 scRNA-seq,10x scRNA-seq

研究結(jié)果
1. 實驗設(shè)計和計算質(zhì)量控制評估
為全面測試代謝標(biāo)記單細(xì)胞RNA測序(scRNA-seq)中不同化學(xué)轉(zhuǎn)化方法的性能,作者以Drop-seq平臺為基礎(chǔ),在源自斑馬魚胚胎的ZF4成纖維細(xì)胞系上測試了10種化學(xué)轉(zhuǎn)化方法,通過dynast流程及專用質(zhì)控流程,從RNA完整性、轉(zhuǎn)化效率、RNA回收率三個維度評估方法優(yōu)劣。結(jié)果顯示,mCPBA/TFEA(pH5.2)等磁珠轉(zhuǎn)化方法表現(xiàn)最優(yōu),平均T-to-C替換率超8%,且對cDNA完整性影響較小,每個細(xì)胞在10,000條測序reads下可檢測約2,044個基因和5,468個UMI,與未處理樣本水平相當(dāng),且磁珠方法中T-to-C替換率是原位轉(zhuǎn)化方法的 2.32倍。這一結(jié)果為代謝標(biāo)記scRNA-seq中化學(xué)轉(zhuǎn)化方法的選擇提供了直接基準(zhǔn),明確了磁珠上轉(zhuǎn)化方法在效率和完整性上的優(yōu)勢,為后續(xù)研究奠定方法學(xué)基礎(chǔ)。
 

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圖1 使用ZF4細(xì)胞對十種化學(xué)轉(zhuǎn)化方法進(jìn)行比較和評估。

2. 細(xì)胞周期中的 mRNA 控制策略
為探究代謝RNA標(biāo)記在細(xì)胞周期mRNA調(diào)控研究中的應(yīng)用價值,作者將52,529個經(jīng)不同化學(xué)轉(zhuǎn)化處理的細(xì)胞分為穩(wěn)態(tài)和分裂細(xì)胞集群,結(jié)合流式細(xì)胞術(shù)、相關(guān)性分析及基因表達(dá)分析評估方法效果。結(jié)果表明,4sU標(biāo)記本身不影響細(xì)胞周期分布,但OsO₄和IAA(37°C)處理會導(dǎo)致分裂細(xì)胞減少;磁珠上轉(zhuǎn)化方法在標(biāo)記與未標(biāo)記RNA檢測上一致性更高(Pearson’sr>0.9),且mCPBA類方法能高效識別細(xì)胞周期相關(guān)基因(如tubb4b),其標(biāo)記轉(zhuǎn)錄本比例與T-to-C替換率正相關(guān),同時細(xì)胞周期基因的RNA半衰期顯著短于管家基因。這一發(fā)現(xiàn)證實了優(yōu)化后的代謝標(biāo)記方法可準(zhǔn)確捕捉細(xì)胞周期中的RNA動態(tài),為解析細(xì)胞周期相關(guān)的基因表達(dá)調(diào)控機制提供了可靠技術(shù)手段,也為后續(xù)研究RNA穩(wěn)定性與細(xì)胞功能的關(guān)聯(lián)提供了數(shù)據(jù)支持。

3. 鑒定斑馬魚胚胎發(fā)育中的合子激活轉(zhuǎn)錄本
為驗證優(yōu)化化學(xué)轉(zhuǎn)化方法在體內(nèi)的適用性,研究以斑馬魚母源-合子轉(zhuǎn)換為模型,在5.5hpf胚胎細(xì)胞(合子轉(zhuǎn)錄本占比9.33%)中應(yīng)用不同方法,通過新RNA與總RNA比例(NTR)劃分母源、合子及母源-合子基因,并與公開數(shù)據(jù)集對比。結(jié)果顯示,基于mCPBA的方法能識別更多合子基因,約78%新轉(zhuǎn)錄RNA基因為母源-合子基因(MZ),與斑馬魚bulkRNA-seq及爪蟾新生RNA-seq結(jié)果高度一致,且T-to-C替換率越高,高NTR閾值下合子基因識別差異越顯著,全胚胎原位雜交及內(nèi)含子探針驗證進(jìn)一步確認(rèn)了合子轉(zhuǎn)錄本的準(zhǔn)確性。這一成果證明優(yōu)化方法可高效解析體內(nèi)胚胎發(fā)育中的RNA動態(tài),為深入研究母源-合子轉(zhuǎn)換機制及合子基因組激活(ZGA)提供了關(guān)鍵技術(shù)支撐,也為其他物種早期胚胎發(fā)育的轉(zhuǎn)錄組研究提供了參考。

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圖2 利用改進(jìn)的化學(xué)轉(zhuǎn)化方法在斑馬魚胚胎發(fā)育中鑒定合子激活轉(zhuǎn)錄本

4.鑒定斑馬魚胚胎發(fā)育中的合子激活轉(zhuǎn)錄本
為解決Drop-seq平臺(細(xì)胞捕獲效率約5%)在稀有細(xì)胞樣本研究中的局限性,研究對比了10×Genomics和華大C4兩種高捕獲效率(約50%)商業(yè)化平臺,測試不同化學(xué)轉(zhuǎn)化方法與平臺的兼容性。結(jié)果顯示,華大C4支持磁珠上轉(zhuǎn)化,其結(jié)合IAA(32°C)方法的T-to-C替換率最高(8.44%),文庫復(fù)雜度也更優(yōu);10×Genomics僅限原位轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)化效率較低但文庫復(fù)雜度較高;相同原位化學(xué)條件下,C4平臺的T-to-C替換率(5.74%)高于其他平臺,且商業(yè)化平臺在基因和UMI檢測數(shù)上均優(yōu)于定制化Drop-seq。這一對比明確了不同平臺的優(yōu)勢與適用場景,為稀有細(xì)胞(如早期胚胎細(xì)胞)研究提供了平臺與方法的最優(yōu)組合方案,有助于推動低細(xì)胞量樣本的轉(zhuǎn)錄組動態(tài)研究。

 

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圖3 10×Genomics、Drop-seq和華大C4高通量單細(xì)胞平臺的比較

參考文獻(xiàn):
[1]ZhangX,PengM,ZhuJ,ZhaiX,WeiC,JiaoH,WuZ,HuangS,LiuM,LiW,YangW,MiaoK,XuQ,ChenLandHuP2025BenchmarkingmetabolicRNAlabelingtechniquesforhigh-throughputsingle-cellRNAsequencingNatCommun165952.

發(fā)布者:上海伯豪生物技術(shù)有限公司
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