動作電位(Action Potential,AP)的分析指標:
1) AP:是指心肌細胞在受到有效刺激后,細胞膜電位發(fā)生的一種快速、短暫且可逆的電位變化。
2) 心率 (Heart Rate, HR):HR=1000/BCL(ms) × 60,其中BCL為相鄰兩個AP之間的周期(ms)。
3) 激活時間 (Active Time):由激活起點至全部細胞完成激活的時間差,通;跓晒庾兓俾首畲螅╠F/dt max)時間點進行判定。
4) 傳導(dǎo)速度 (Conduction Velocity, CV):從最先興奮的像素點到最后興奮的像素點的平均速度,CV=d/t,其中d為最早與最晚激活像素點間的距離,t為對應(yīng)時間差(ms)。
5) 傳導(dǎo)離散度 (Conduction Dispersion):表示不同區(qū)域傳導(dǎo)速度的空間變異性,通常以標準差或變異系數(shù)形式量化。
6) 上升時間 (Rise Time):AP上升(Depolarization)期間,從基線至峰值所需時間。
7) AP 時程(APD):細胞膜從AP去極化起始到復(fù)極化完成、膜電位恢復(fù)至靜息水平的總時間,常用APD90表示復(fù)極至90%所需時間。
8) APD 異質(zhì)性(離散):AP時程離散度表明 AP復(fù)極時程的均一性。

鈣瞬變(Calcium Transient,CaT)信號的分析指標:
1) CaT振幅 (Amplitude):CaT波形峰值相對于基線的高度,代表胞內(nèi)游離Ca2+的最大濃度。
2) 鈣釋放時間 (Time to Ca2+ Release, Ton):從Ca2+開始釋放至達到最大濃度的90%所用時間。
3) CaT時程 (CTD):CaT從峰值下降至基線的時間,如CTD₉₀指鈣濃度恢復(fù)至90%的時間。
4) CTD異質(zhì)性(離散):鈣瞬變時程離散度表明鈣瞬變時程的不均一性。

其他關(guān)鍵指標:
1) 電交替(Electrical Alternans):同一起搏點下,心電信號出現(xiàn)規(guī)律性交替;定義閾值:APD差值 >5ms 或Ca2+瞬變交替的振幅變化率>20%。
2) 鈣衰減時間常數(shù)(Calcium decay time constant,Tau):胞內(nèi)鈣濃度從峰值水平衰減到峰值的1/e(約37%)所需的時間。
3) 舒張期間期(Diastolic Interval, DI):從AP復(fù)極結(jié)束至下一次激活開始所用的時間。
4) 心室有效不應(yīng)期(Ventricular Effective Refractory Period,VERP):心室肌細胞從一次動作電位的去極化起始(0期去極化)到復(fù)極化進程中膜電位恢復(fù)至約-60mV的時間段內(nèi),無論施加強度多大的刺激,均無法觸發(fā)一次新的可傳導(dǎo)動作電位的時期。
5) 竇房結(jié)恢復(fù)時間(Sinus Node Recovery Time,SNRT):竇房結(jié)恢復(fù)時間(SNRT)是通過心房超速起搏抑制竇房結(jié)自律性后,停止起搏,從最后一個心房起搏脈沖到第一個自主竇性P波起點的時間間隔,是評估竇房結(jié)自律功能的核心電生理指標。
染料介紹:
1) Rhod-2AM(Rhod-2 acctoxymcthylcster)是一種細胞膜透過性鈣離子敏感熒光染料,分子質(zhì)量為 1123.94g/mol 標準配制溶劑為 DMSO,配制和保存過程需要全程避光。
2)RH-237(4-[2-[6-(Dioctylamino)-2-naphthyl]ethenyl]-1-(3-sulfopropyl)pyridinium hydroxideinner salt)是一種膜電位敏感熒光染料,常與鈣敏感染料(如Rhod-2AM)聯(lián)用。其分子質(zhì)量為 496.7g/mol,推薦溶劑為DMSO,避光條件下輕柔渦旋混勻,必要時進行短時間超聲助溶。
Protocol(小鼠光標測實驗案例)
一、實驗前準備
(一)主要試劑:
KH液、RH-237、Rhod-2AM、Pluronic F-127、Blebbistatin、肝素鈉溶液。
(二)主要器材:
手術(shù)剪1把 、眼科剪1把、眼科彎鑷2把、止血鉗1把、手術(shù)縫線(5-0)、100mL量筒1個、2 mL注射器1個、20mL注射器1個、主動脈插管1個、主動脈夾、10cm玻璃培養(yǎng)皿1個、3.5cm培養(yǎng)皿1個、顯微鏡。
(三)主要溶液配方:
1.KH液

注:KCl、KH2PO4、MgCl2 6H2O可配制為10×母液;溶液配好后需經(jīng)0.22 μm微孔濾膜過濾;
KH液配制完成后,在使用前,提前30min充氧(混合氧:95%O2, 5%CO2)飽和。
2.肝素鈉溶液:生理鹽水配制,1000U/mL。
3.興奮-收縮解偶聯(lián)劑Blebbistatin母液,DMSO溶解1mg/ml,分裝為100µL/tube, -20℃儲存?zhèn)溆。(摩爾質(zhì)量292g/mol)
4.制備熒光染料的母液:為避免反復(fù)凍融,將染料提前配制并進行分裝儲存于-20℃。
A: 電壓敏感染料RH237,DMSO溶解為1mg/mL,分裝為40µL/tube;
B:鈣指示劑Rhod-2AM,DMSO溶解為1 mg/mL,分裝為40µL/tube。
二、模型的制備
(一)心臟獲取與處理
1.C57小鼠稱重,腹腔注射肝素鈉(100U/20g),15min后脫頸處死。
2.然后置于實驗臺固定,倒“T”形開胸,暴露心臟。用鑷子夾起肺,使心臟提起,沿肺后部快速剪下心臟, 取心臟置于裝有預(yù)冷KH液的玻璃培養(yǎng)皿內(nèi)。
(二)Langendorff灌流
1.在體式鏡下迅速找到主動脈,剪去多余組織,將主動脈小心套在套管底部,用手術(shù)縫線(規(guī)格6-0)結(jié)扎扎緊,并將注射器內(nèi)預(yù)先準備的KH液輕輕推入心臟,泵出心臟殘血,進行Langendorff灌流。灌流速度為2.5mL / min,灌流溫度為37±0.5℃。灌流15min,排出心臟內(nèi)殘余血液及使心臟恢復(fù)正常節(jié)律。

三、高分辨熒光標測記錄(全過程均在避光環(huán)境下進行)
(一)停跳及熒光染色
1.心臟穩(wěn)定后,在50mL循環(huán)KH液中加Blebbistatin(150μL),使心臟停跳;
2.加入Pluronic F-127(20μL)脫酯化,輔助鈣負載,循環(huán)灌流15min;
3.將鈣指示劑20μL Rhod-2AM稀釋從給藥口緩慢注射+20μL Rhod-2AM直接加入循環(huán)罐;
4.將電壓敏感染料RH237(40μL)加入循環(huán)罐后,循環(huán)灌注35min;
5.將負載完染料的心臟移至成像灌流室。
(二)數(shù)據(jù)采集
1.將心電圖(ECG)電極放置心臟兩側(cè),連續(xù)記錄ECG。
2.激發(fā)光由兩個530±25 nm的LED光源發(fā)出,并在511–551nm處進行了帶通濾波(LEDC-2001,MappingLab)。
3.通過物鏡收集來自心臟的發(fā)射光,并用二向分色鏡在630nm處分離信號。其中AP信號在700nm處進行長通濾波,而細胞內(nèi)Ca2+信號用590nm帶通濾光片(帶寬35nm)進行濾波。使用兩個CMOS攝像頭(OMS-PCIE-2002,MappingLab)0.8kHz的采樣率采集心臟發(fā)出的熒光信號。
四、結(jié)果展示
(一)小鼠實驗結(jié)果展示
1.給予左房8Hz刺激后,記錄左右心房的動作電位與鈣瞬變信號,數(shù)據(jù)展示如下:

A 圖為心臟標測區(qū)域示意圖
B 圖為心房傳導(dǎo)等時圖
C 圖為心房動作電位時程分布圖
D 圖為左右心房動作電位波形代表圖

A 圖心房鈣信號傳導(dǎo)等時圖、鈣瞬變時程分布圖
B 圖為左心房鈣信號波形代表圖
2.竇性節(jié)律下心室數(shù)據(jù)展示:

A 圖為小鼠心室標測區(qū)域
B 圖為心室傳導(dǎo)時間等時圖
C 圖為左右心室動作電位波形圖
3.房顫模型數(shù)據(jù)展示:


A 整個心房致心律失常動作電位交替
B 50Hz起搏刺激下CaT交替的代表圖
C-D 50Hz房顫誘發(fā)過程中折返現(xiàn)象
五、注意事項
1、用去離子水沖洗系統(tǒng)(冷-熱-冷),使系統(tǒng)保持潔凈,并通過調(diào)節(jié)蠕動泵,使出液口達到相應(yīng)的灌流速度;
2、KH液使用前需要提前充氧( 95%O2 +5%CO2 )飽和,使灌流液達到氧飽和狀態(tài);
3、排出灌流系統(tǒng)內(nèi)空氣,使灌流液充滿整個管路;
4、打開循環(huán)水加熱系統(tǒng),調(diào)節(jié)循環(huán)水溫度,使流出的灌流液溫度為 37℃左右;
5、在光標測實驗過程中,通過灌流系統(tǒng)注射停跳劑和熒光染料時注意避光;
6、通過灌流系統(tǒng)注射停跳劑和熒光染料時,需緩慢勻速注射,防止堵塞冠脈造成心肌梗死。
參考文獻:
[1]Huaxin S ,Jie S ,Kai L , et al.Increased β1-Adrenergic Receptor Antibody Confers a Vulnerable Substrate for Atrial Fibrillation via Mediating Ca2+ Mishandling and Atrial Fibrosis.[J].Clinical science (London, England : 1979),2023,137(2):DOI:10.1042/CS20220654